Версия для слабовидящих
на стартовую написать письмо карта сайта контакты 
Научная деятельность Медицинская деятельность Образование Поиск по сайту

ЛАБОРАТОРИЯ КЛЕТОЧНО-МОЛЕКУЛЯРНОЙ ФИЗИОЛОГИИ И ПАТОЛОГИИ
НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКОГО ИНСТИТУТА
МЕДИЦИНСКИХ ПРОБЛЕМ СЕВЕРА

Изучение регуляторных и молекулярно-клеточных механизмов функционирования иммунной системы в норме и при различных иммунопатологических процессах и разработка новых методов диагностики, иммунотерапии и иммунореабилитации.

В лаборатории создана база для проведения молекулярно-генетических и клеточных технологий. Разработан комплекс биолюминесцентных методов исследования, которые позволяют оценить активность ферментов, характеризующих различные метаболические процессы в клетках, и внутриклеточной концентрации ряда интермедиатов и коферментов. Модифицированы методы хемилюминесцентного анализа для оценки состояния респираторного взрыва в фагоцитирующих клетках. Широко применяются современные методы определения фенотипа клеток (с оценкой уровней экспрессии активационных и адгезионных антигенов). Используется мультиплексный анализ для оценки вне-и внутриклеточной концентрации цитокинов, ростовых и транскрипционных факторов. Внедрены современные методы генетической диагностики предрасположенности человека к различным заболеваниям.

Заведующий лабораторией клеточно-молекулярной физиологии и патологии

Савченко Андрей Анатольевич

доктор медицинских наук, профессор
Контакты: +7(905)971-37-15,e-mail:aasavchenko@yandex.ru

Беленюк
Василий Дмитриевич
М.н.с.
Борисов
Александр Геннадьевич
К.м.н., в.н.с.
Бурдин
Вадим Николаевич
М.н.с.
Гвоздев
Иван Игоревич
М.н.с.
Коленчукова
Оксана Александровна
Д.б.н., доцент, в.н.с.
Коноплева
ОльгаСергеевна
К.м.н., м.н.с.
Малинчик
Марина Александровна
Лаборант-исследователь
Мошев
Антон Викторович
М.н.с.
Осокина
Елена Валерьевна
Лаборант-исследователь
Смольникова
Марина Викторовна
К.б.н., в.н.с.
Степаненко
Татьяна Борисовна
Лаборант-исследователь

Основные направления исследований лаборатории клеточно-молекулярной
логии и патологии

- Изучение эпидемиологии, особенностей патогенеза и течения наиболее распространенных инфекционных, неинфекционных и мультифакториальных заболеваний взрослого и детского населения Сибири и Севера.
- Изучение регуляторно-метаболических механизмов функционирования клеток иммунной системы при онкологических, аутоиммунных и инфекционно-воспалительных заболеваниях.
- Разработка эффективных методов профилактики, диагностики, лечения и реабилитации наиболее распространенных заболеваний коренного и пришлого населения Сибири и Севера.

Задачи исследований лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии

  • Определить регуляторные и метаболические механизмы нарушения функциональной активности клеток иммунной системы при онкологических заболеваниях и на их основе разработать методы молекулярно-клеточной терапии и иммунореабилитации.
  • Исследовать метаболические механизмы нарушения функциональной активности клеток иммунной системы при инфекционно-воспалительных, аллергических и аутоиммунных заболеваниях и на их основе разработать новые методы диагностики и прогноза характера течения и исхода заболеваний.
  • Изучить регуляторно-метаболические механизмы иммунных и воспалительных процессов в генезе основных неинфекционных заболеваний и разработать новые методы и технологии оптимизации их профилактики, диагностики, лечения и реабилитации.
  • Установить особенности иммуногенетических показателей у здорового европеоидного населения Красноярского края и у больных мультифакториальными заболеваниями во взаимосвязи с генотипами полиморфных вариантов генов провоспалительных и противовоспалительных цитокинов.

Основные достижения лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии
На основе данных исследований разработана регуляторно-метаболическая концепция развития иммунопатологических состояний, что послужило базой для создания биохемилюминесцентного комплекса индивидуальных методов диагностики иммунометаболических нарушений и оценки воздействия различных лекарственных препаратов на клетки иммунной системы, а также методов прогноза характера течения и исходов различных заболеваний. Разработана концепция механизмов развития иммунодефицитных состояний при адаптации к климато-географическим условиям Крайнего Севера. Подробно исследован фенотипический состав клеток иммунной системы в крови у больных распространенным гнойным перитонитом, на основании чего зарегистрирован новый метод прогноза исхода данного заболевания. Разработана технология получения метаболически-индуцированной дендритноклеточной вакцины с высоким уровнем антигенпрезентационной активности для лечения и иммунореабилитации онкологических больных. Исследование распределения генотипов генов цитокиновой сети и генов белков противоинфекционной защиты организма у коренных национальностей Таймырского Долгано-Ненецкого района Красноярского края и в популяционной группе европеоидов Красноярского края выявили специфические генетические маркеры, позволяющие прогнозировать развитие и течение заболеваний.
Основные приборы и оборудование лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии

Автоматический биохемилюминесцентный анализатор БЛМ-3606М

Биохемилюминометр БЛМ-3606М предназначен для измерения сверхслабых световых потоков, возникающих в результате биохимических реакций на основе бактериальных и других люцифераз, а также при спонтаннойи индуцированной хемилюминесценции.
Технические характеристики:
Область спектральной чувствительности, нм                                         300 - 800
Объем измерительной кюветы, мл                                                                       1
Общее количество кювет, шт.                                                                   36
Количество рабочих кювет, шт.                                                                35
Диапазон температуры кюветного отделения, С                                                20 -45
Динамический диапазон измерений                                                        1 - 1000000
Время измерения одной точки биохемилюминесцентной
кривой, сек.                                                                                                 0,1 - 10
Время перехода между двумя рядом стоящими пробами,
не более, сек.                                                                                               0,3
Общее время измерения биохемилюминесценции, мин                                   1 - 240
Число точек измерения на каждую биохемилюминесцент-
ную кривую                                                                                                 1 - 440
Количество каналов для подключения внешних дозаторов                  4

Проточный цитофлуориметр NaviosTM (Beackman Coulter, USA)
(Центр коллективного пользования КНЦ СО РАН)

Проточный цитометр Navios™ – новейшая разработка в области проточной цитометрии, предназначенная дляпроведения клинических и научных исследований. Иммерсионные линзы, система оптического геля, волоконная оптика, широкий динамический диапазон регистрации сигналов и разрешение сигналов по 1048576 каналам обеспечивают высокую чувствительность и превосходное разрешение во всем рабочем диапазоне. Пространственно разделенные оптические пути позволяют проводить анализ практически без введения коэффициентов компенсации.
Основные технические характеристики:
1. Источники света:

  • синий полупроводниковый диодный лазер, 488 нм, выходная мощность 22 мВт;
  • красный полупроводниковый диодный лазер, 638 нм, выходная мощность 25 мВт.

2. Конфигурация оптической системы -пространственно разделенные пучки лазеров (лучи должны быть разведены не менее чем на 125 мкм).
3. Мощность лазерного излучения в проточной ячейке:

  • синий – не менее 20 мВт;
  • красный – не менее 20 мВт.

4. Проточная ячейка - прямоугольная кварцевая, 150 х 460 мкм.
5. Собирающая оптика:

  • иммерсионные линзы 1,2 NA;
  • система оптического геля.

6. Устройство оптического блока:

  • открытая архитектура, позволяющая пользователю быстро заменить оптические фильтры для решения поставленной задачи;
  • отражающая оптика с углом отражения 18°.

7. Детекторы:

  • детектор светорассеяния в прямом направлении -полупроводниковый детектор на основе модели Фурье с возможностью изменения угла регистрации светорассеяния в прямом направлении (1-8° для регистрации частиц размером 8-40 мкм и 1-19° для регистрации частиц размером 0,5-10 мкм);
  • детектор светорассеяния в боковом направлении -высокоэффективный фотодиод с независимой фокусировкой и электронным аттенюатором;
  • фотоэлектронные умножители для регистрации флюоресценции (8 детекторов – FL1-FL8).

8. Фильтры детекторов, нм:

  • светорассеяние в прямом направлении- 488;
  • синий лазер- 526, 575, 620, 695, 755 для регистрации флуорохромов FITC, PE, ECD, PC5 или PEC5,5, PECy7;
  • красный лазер- 660, 755 для регистрации флуорохромов APC или Alexa647, APCAlexa700, APCCy7, APCAlexa750;
  • возможность замены пользователем детекторов и фильтров.

9. Регистрация светорассеяния и флуоресценции:

  • одновременная регистрация 2-х параметров светорассеяния;
  • до 8 флуорохромов одновременно, в том числе, синий лазер – не менее 5, красный лазер – не менее 3.

10. Чувствительность и разрешение:

  • при регистрации светорассеяния прибор должен отличать частицы размером 0,404 мкм от фонового шума, максимальный размер частиц – не менее 40 мкм;
  • пороговая чувствительность флуоресценции: не менее 112 MESF для FITC, не менее 78 MESF для PE, не менее 15 MESF для PC5, не менее 75 MESF для APC;
  • динамический диапазон регистрации данных – не менее 6 декад.

11. Параметры цветовой компенсации - компенсация «всех против всех» (построение полной компенсационной матрицы), возможность ручного и автоматического введения коэффициентов компенсаций.
12. Виды получаемых сигналов и возможность их обработки:

  • 5 различных сигналов от каждого детектора: площадь сигнала в линейной и логарифмической шкалах, пик сигнала в линейной и логарифмической шкалах, время детекции сигнала в линейной шкале;
  • время и соотношение;
  • возможность выбора до 62 параметров;
  • формат данных - формат файлов FCS 3.0.

13. Обработка сигналов:

  • динамический диапазон считывания данных (разрядность аналогово-цифрового преобразователя) – не менее 20 бит;
  • разрешение рабочей станции (аналогово-цифрового преобразователя) – не менее 1 048 576 каналов;
  • цифровая обработка с частотой не менее 40 МГц.

14. Максимальная скорость сбора данных – до 25000 событий в секунду.
15. Производительность:

  • при анализе 10000 лимфоцитов – не менее 80 пробирок в час;
  • на скорости считывания 10000 событий в секунду – не менее 88 пробирок в час.

16. Работа с образцами:

  • низкая, средняя и высокая скорости подачи образца;
  • расход обжимающей жидкости при считывании данных – не более 780 мл/час, перенос – менее 0,1%;
  • наличие возможности работы с одиночными пробирками и с многопробирочным карусельным загрузчиком (не менее 32 позиций для пробирок 12 х 75 мм);
  • автоматическое считывание данных для образцов рабочего списка;
  • ручной режим для образцов рабочего списка;
  • перемешивание образцов: запатентованный вортексный миксер, обеспечивающий перемешивание образца в каждой пробирке перед началом анализа;
  • возможность считывания штрих-кода с карусели, позиции пробирки в карусели, а также штрих-кода отдельных пробирок перед началом анализа;
  • автоматическая промывка прибора после завершения анализа каждого образца.

Проточный цитофлуориметр CytomicsTM FC-500 (Beackman Coulter, USA)

Проточный цитометр FC-500 позволяет максимально упростить выполнение исследований в области проточной цитометрии, повысить их эффективность и производительность. В проточном цитометре реализована передовая технология 5-ти цветного анализа с применением одного лазеров, что дает возможность увеличить информативность метода за счет анализа большего числа антител в одной пробирке. Кроме того, цитометр FC-500 имеет гибкую систему управления каждым аспектом цитометрического исследования с помощью новейшего программного обеспечения CXP.
Общая характеристика:
1. Основной источник света: цитометр содержит в качестве источника света синий (488 нм) аргоновый лазер с воздушным охлаждением. Стабильность и однородность луча газового лазера обеспечивает высокий класс измерений. При выходной мощности лазера 20 мВт чувствительность измерений оказывается достаточной для исследования даже слабо экспрессируемых клеточных маркеров. Пятицветный анализ в однолазерной модели реализуется с применением комбинации конъюгатов антител с флуорохромами FITC - PE - ECD - PC5 - PC7 различных производителей. Вместо PC5 можно использовать PerCP или PE-Cy5.5.
2. Оптическая схема: в цитометре FC 500 применена классическая «однолучевая» оптическая структура.
3. Блок спектрального разделения флуоресцентного сигнала: блок многоцветного анализа содержит пять оптических датчиков и систему фильтров и светоделительных зеркал. Оператор может легко заменить любое зеркало или фильтр с целью использовать иную комбинацию флуоресцентных красителей. Такая операция не требует перенастройки прибора.
4. Детектор переднего светорассеивания FS: размер клетки регистрируется по сигналу переднего светорассеяния (FS или ForwardScatter). От угла сбора рассеянного света существенно зависит то, какие классы клеток детектор будет хорошо разрешать. Диапазон углов сбора 1-8° оптимален для относительно крупных клеток - лейкоцитов, эритроцитов и клеток тканей. Диапазон углов 1-19° даёт возможность различать между собой гораздо более мелкие элементы.
5. Дискриминаторы и чувствительность: оптические и электронные схемы цитометра настолько чувствительны, что наряду с более или менее интенсивными полезными сигналами улавливают и огромное множество слабых мешающих сигналов, порождаемых, например, остатками разрушенных клеток (дебрисом). Для отделения таких незначимых сигналов в каждом измерительном канале цитометра (FS, SS, FL1-FL5) можно задать пороговый уровень - дискриминатор. Сигналы меньшего уровня будут восприниматься как незначимые.
6. Цифровая обработка сигналов и цветовая компенсация: сигналы фотодетекторов преобразуются в цифровую форму и далее обрабатываются цифровыми сигнальными процессорами (DSP). Такой способ обработки позволил повысить точность логарифмического преобразования. Но переход на цифровую обработку имеет и гораздо более важные последствия. FC500 - первый цитометр фирмы BeckmanCoulter, позволяющий вводить цветовую компенсацию по окончании сбора данных. Собранные данные сохраняются в файле формата FCS3.0. Если компенсация не была введена до сбора данных, её можно ввести в любое время. Если при анализе обнаружена ошибка, то компенсацию можно будет скорректировать не повторяя измерение на цитометре. Это особенно существенно, когда объём пробы очень мал.
7. Общая характеристика программного обеспечения: программное обеспечение для управления проточным цитометром функционирует в операционной системе Windows 2000. На управляющий компьютер устанавливается программа CXP Cytometer, предназначенная для управления цитометром и сбора и анализа данных, и программный продукт CXP Analysis, используемый для анализа цитометрических данных.

Проточный флуоресцентный анализатор Luminex™ 200
(ZeusScientific, USA) (Центр коллективного пользования КНЦ СО РАН)



Технология LuminexxMAP основана на использовании полистироловых микросфер (Ø 5,6 мкм). Микросферы окрашены двумя или тремя флуорофорами в различных соотношениях. Это позволяет получить до 500 типов микросфер, каждая из которых обладает уникальными спектральными характеристиками, т.е. имеет собственную «спектральную подпись». На поверхности микросфер каждого типа расположены флуоресцентные репортеры − реагенты, специфически взаимодействующие с исследуемыми маркерами (аналитами).
Проточный флуориметр LuminexTM 200 позволяет считывать спектральный адрес конкретной микросферы и сигнал репортерного флуорофора, интенсивность которого зависит от количества связавшегося аналита. Сигнал считывается от каждой индивидуальной микросферы (по принципу проточной цитометрии). Полученные данные суммируются в виде профиля аналитов в зависимости от спектрального адреса конкретной микросферы и репортера. Aнализ проводится в формате стандартного 96-луночного планшета с возможностью определения до 500 аналитов в каждой отдельной лунке планшета. Таким образом главным преимуществом мультиплексного анализа на основе технологии LuminexxMAP, как альтернативы ИФА, является возможность определения множества различных аналитов в образце.
Основные технические характеристики:
1. Точность и воспроизводимость:

  • погрешность объема поглощения образца: ±5%;
  • классификация микросфер: >80%;
  • ошибка в классификации микросфер: ≤ 2%;
  • температурный контроль: от 0°C до +2°C от установленной.

2. Оптика:

  • репортный лазер: 532 нм, номинальная мощность: 10 - 15 мВт, максимальная – 500 мВт, диод с самоудвоением частоты, незатухающая волна (CW);
  • классификационный лазер: 635 нм, 9,1 ± 6%, максимальная мощность – 25 мВт, диод, незатухающая волна (CW);
  • репортный детектор: фотоумножитель, ширина полосы детекции: 565 – 585 нм;
  • классификационный детекор: лавинный фотодиод с температурной компенсацией;
  • чувствительность флуоресценции, минимальное регистрируемое количество молекул флуорохромафикоэритрина (РЕ) - 1000 молекул РЕ на одну микросферу;
  • оптическая платформа: фиксированная, не требующая юстировки с пространственно разделенными оптическими путями разных лазеров;
  • динамический диапазон световых детекторов: не менее 3,5 порядков для любого канала при линейном или логарифмическом усилении.

3. Жидкостная система:

  • скорость обжимающей жидкости: 90 мкл ± 5 мкл/сек;
  • проточная кювета: канал квадратного сечения шириной 200 микрон;
  • скорость инжекции образца: 1 мкл/сек;
  • объем обновления образца: 20 – 200 мкл.

4. Формат планшетов:

  • 96-луночный формат;
  • автоматический забор до 96 образцов;
  • тип совместимых планшетов: плоскодонные, конические, круглодонные, фильтрационные;
  • обнаружение и детекция флуоресценцентной эмиссии при 575 нм на поверхности от 1 до100 уникальные микросфер в одном образце.

5. Программное обеспечение: предустановленная программное обеспечение xPONENT 3.1.

 

 

Флуоресцентный спектрофотометр Agilent Cary Eclipse (Agilent Technologies, USA)

Сагу Eclipse-спектрофлуориметр с двумя сверхбыстрыми сканирующими монохроматорами, построенный на основе пульсирующей ксеноновой лампы и оптики Шварцшильда. Сагу Eclipse разрабатывался как спектрофлуориметр широкого профиля для проведения исследовательских работ и рутинных измерений, обладающий максимальной чувствительностью, скоростью и мощным пакетом программного обеспечения, превосходящим все современные аналоги.
Сагу Eclipse обеспечивает работу в режимах измерения флуоресценции, фосфоресценции, хеми- и биолюминесценции и дает возможность сбора 80 точек в секунду в режиме флуоресценции, что необходимо для изучения быстрых кинетических процессов. В режиме фосфоресценции сбор данных проводится каждую микросекунду. Чувствительность Сагу Eclipse позволяет определять пикомольные концентрации в пробах малого (0.5 мл в стандартной кювете) объема. Геометрия горизонтального пучка обеспечивает максимальную эффективность светоотдачи освещенной части пробы, а применение оптики Шварцшильда - максимальную эффективность использования источника света. Малые размеры (60 × 62.5 × 27.5 см) облегчают установку и работу прибора в лабораторных условиях, а большое кюветное отделение (19.8 × 27.3 × 20.5) позволяет без проблем устанавливать в прибор различные приставки и нестандартные образцы. Сагу Eclipse создан с применением полностью отражающей оптики с кварцевым покрытием. Как и во всех спектрофотометрах серии Сагу, оптические компоненты смонтированы на трехмерной стальной базе для повышенной стабильности при проведении измерений. В Сагу Eclipse используется пульсирующая ксеноновая лампа с продленным временем жизни, аналогичная источнику света спектрофотометра Сагу 60. Лампа включается только в момент сбора данных, что позволяет работать с фотолабильными пробами. Сочетание мощности светового импульса лампы со светособирающей оптикой Шварцшильда обеспечивает максимальную чувствительность прибора, повышает светоотдачу более чем в 100 раз и создает световую иммунность к комнатному освещению при открытом кюветном отделении. Высокая скорость сканирования позволяет собирать полный спектр менее чем за 3 секунды, экономит время исследователя и дает возможность изучения быстрых процессов. Встроенные турели с набором оптических фильтров, подбираемых программно или автоматически, максимизируют соотношение сигнал/шум и позволяют работать с пиками на втором порядке дифракции.
Основные технические характеристики:
Источник света                                          пульсирующая Хе лампа
Ширина импульса                                    2 мкс
Эквивалентная мощность                                   75 кВт
Оптика                                                        Шварцшильда
Монохроматоры                                         Черни-Турнера, 0.125 м
Дифракционные решетки                                   30 х 35 мм, 1200 линий/мм
Детекторы                                                   два ФЭУ R298
Оптический диапазон                              Возбуждение: 200-900 нм , Эмиссия: 200-900 нм
Спектральная ширина щели                  1.5, 2.5, 5, 10 и 20 нм
Максимальная скорость сканирования           24000 нм/мин
Скорость сбора кинетических данных 4800 точек/мин
Время усреднения сигнала                                  Флюоресценция: 0.0125 - 999 с,
Фосфоресценция: 1 мкс-10с,
Био/Хемилюминесценция: 40 мкс-10с.

Методы исследований

  • Биолюминесцентный метод определения внутриклеточной активности NAD- и NADP-зависимых дегидрогеназ и концентрации основных интермедиатов и коферментов.
  • Хемилюминесцентный анализ определения интенсивности и кинетики респираторного взрыва в фагоцитирующих клетках.
  • Проточная цитометрия – метод регистрации оптических параметров клеток или частиц по сигналам светорассеивания и флуоресценции. Позволяет исследовать фенотип клеток с оценкой уровней экспрессии активационных и адгезионных рецепторов, а также содержание различных внутриклеточных молекул (внутриклеточные цитокины, транскрипционные факторы, регуляторные белки и т.д.).
  • Молекулярно-генетические методы – полимеразная цепная реакция (ПЦР, RT-PCR), рестрикционный анализ фрагментов амплификации, электрофоретическая детекция.
  • Мультиплексный анализ метаболитов в жидких средах организма invitro- мультиплексный анализатор белков и нуклеиновых кислот MagPix по технологии xMAP на магнитных микросферах позволяет определять до 50 метаболитов в микроколичествах образца.
  • Иммуноферментный метод – определение содержания сывороточных общих и специфических иммуноглобулинов, провоспалительных и противовоспалительных цитокинов.
  • Спектрофотометрический – определение показателей липопероксидации и факторов антиоксидантной защиты.

В состав лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии входит ГРУППА МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ
Руководитель группы Смольникова Марина Викторовна, к.б.н.



Цель исследований – разработка персонифицированных прогностических критериев, ранней диагностики и терапии заболеваний человека, популяционная генетика.
Основные направления научных исследований группы молекулярно-генетических исследований:
- поиск общих и специфических маркеров предрасположенности к развитию многофакторных заболеваний (МФЗ) человека;
- создание уникальных банков ДНК коренных народностей арктических территорий Красноярского края, а также ДНК здоровых лиц европеоидного происхождения и больных МФЗ.
С 2018 года группа является соисполнителем международного проекта с мировым уровнем значимости “GenomeAsia100K”, результатом которого станут результаты популяционного скрининга геномов азиатских популяций.
В 2014-2017 г.г. сотрудники группы являлись основными исполнителями проекта «Этнически ассоциированные факторы риска высокого уровня младенческой смертности у детей коренного населения Крайнего Севера: поисковое исследование генетической предрасположенности к инфекционным заболеваниям», который выполнялся в рамках Программы фундаментальных исследований Президиума РАН «Поисковые фундаментальные научные исследования в интересах развития Арктической зоны Российской Федерации».




Савченко Андрей Анатольевич
Заведующий лабораториейклеточно-молекулярной физиологии и патологии
Доктор медицинских наук, профессор
Контакты: +7(905)971-37-15,E-mail: aasavchenko@yandex.ru
Исследовательские интересы

  • Иммунология,
  • Медицинскаяиммунология,
  • Физиология.

Краткая биография


Годы

Место, должность работы

16.06.1986г.

Томский ордена Трудового Красного Знамени медицинский институт. Врач-биофизик. Диплом НВ № 524050 

1986-1989 г.г.

Аспирантура в НИИ медицинских проблем Севера СО АМН СССР,

01.10.1996 г.

Заведующий лабораторией клеточно-молекулярной физиологии и патологии НИИ медицинских проблем СО РАМН

1990г. защита степени кандидата наук «Морфофункциональная характеристика лимфоцитов у часто болеющих респираторными заболеваниями жителей Крайнего Севера и Сибири», биофизика 03.00.02;
1996г. защита степени доктора наук «Этно-экологические особенности метаболизма лимфоцитов периферической крови при иммунодефицитных состояниях», патологическая физиология 14.00.16;
2005 г. аттестат профессора по специальности «Патологическая физиология».
Повышение квалификации:
- 1989 г. «Эксплуатация ПЭВМ. Основы программирования» (90 часов), Центр информатики Красноярского предприятия ВТИ;
- 2005г. «Естественно-научные основы современной медицины» (190 часов), КрасГУ;
- 2006 г. «Статистика» (234 часа), КрасГУ;
- 2007г. «Аспекты инновационной деятельности преподавателя ВУЗа» (72 часа), СФУ;
- 2008 г. Стажировка в университете Йорка (Торонто, Канада) по клеточной биологии;
- 2008 г. «Развитие иноязычной коммуникативной компетенции как основы успешного профессионального и межкультурного общения» (144 часа), СФУ;
- 2015 г. «Аллергология и иммунология» (144 часа), ФГБНУ «НИИ МПС».
- 2015 г. «Физиология, патологическая физиология» (144 часа) Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России.
- 2015 г. «Преподаватель высшей школы» ФГБОУ ВПО «Красноярский государственный педагогический университет им. В.П. Астафьева» Минобразования России.
- 2017 г. «Психолого-педагогическая деятельность преподавателя высшей школы в контексте стандартов нового поколения» (16 часов) ИПО ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России.
- 2018 г. «Информационно-коммуникационные технологии в учебной и проектной деятельности преподавателя» (36 часов) ИПО ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России.

Савченко А.А. автор 15 монографий, 4 учебных пособий, 30 авторских изобретений и патентов, более 200 статей в отечественных и зарубежных журналах. По данным РИНЦ индекс Хирша составляет 22, средневзвешенный импакт-фактор журналов 0,673, суммарное число цитирований по РИНЦ составляет 2223.

Под научным руководством и консультированием было защищено 35 кандидатских и 6 докторских диссертаций.